細(xì)胞轉(zhuǎn)染的注意事項：血清A,、DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物形成時不能含血清,，因為血清會影響復(fù)合物的形成。B,、一般細(xì)胞對無血清培養(yǎng)可以耐受幾個小時沒問題,，轉(zhuǎn)染用的培養(yǎng)液可以含血清也可以不加,，但血清一度曾被認(rèn)為會降低轉(zhuǎn)染效率，轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進(jìn)行優(yōu)化,。C,、對于對血清缺乏比較敏感的細(xì)胞，可以使用營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基,，或者在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用血清,。對血清缺乏比較敏感的貼壁細(xì)胞，建議使用**轉(zhuǎn)染試劑,。有條件的話,，可以用無血清培養(yǎng)基代替PBS洗細(xì)胞兩遍，注意洗的時候要輕,，靠邊緣緩緩加入液體,，然后不要吹吸細(xì)胞而是轉(zhuǎn)動培養(yǎng)板讓液體滾動在細(xì)胞表面。如果洗的太厲害,，細(xì)胞又損失一部分,，加了脂質(zhì)體后，細(xì)胞受影響就更大了,，死亡細(xì)胞會增多轉(zhuǎn)染試劑的準(zhǔn)備①將400ul去核酸酶水加入管中,，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物,。寧波細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑推薦廠家

細(xì)胞轉(zhuǎn)染常用步驟：1.轉(zhuǎn)染試劑的準(zhǔn)備①將400ul去核酸酶水加入管中,，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物,。②震蕩后將試劑放在－20攝氏度保存,，使用前還需震蕩。2.選擇合適的混合比例(1：1－1：2/脂質(zhì)體體積：DNA質(zhì)量)來轉(zhuǎn)染細(xì)胞,。在一個轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基,。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA，震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑,，再次震蕩,。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘。4.吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,，用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次,。5.加入混合液，將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時,。6.到時后,，根據(jù)細(xì)胞種類決定是否移除混合液,，之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24－48小時。細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價總?cè)旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化,。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染的常用方法：人工脂質(zhì)體法原理：帶正電的脂質(zhì)體與核酸帶負(fù)電的磷酸基團形成復(fù)合物,，進(jìn)而可被細(xì)胞內(nèi)吞穩(wěn)定轉(zhuǎn)染/瞬時性轉(zhuǎn)染。這種方法幾乎適用于所有細(xì)胞,，轉(zhuǎn)染效率高,、重復(fù)型好，但轉(zhuǎn)染時需要去除血清,，轉(zhuǎn)染效果隨細(xì)胞類型變化大,。實驗步驟：在單獨試管中分別稀釋核酸及轉(zhuǎn)染試劑→脂質(zhì)體與核酸的磷酸骨架結(jié)合，形成復(fù)合物→脂質(zhì)體上的正電荷有助于復(fù)合物與細(xì)胞膜結(jié)合→復(fù)合物通過內(nèi)吞作用進(jìn)入胞漿→分析細(xì)胞瞬時基因表達(dá)或沉默情況,。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染那些事兒：1.設(shè)置陰性和陽性對照：一般在轉(zhuǎn)染后24-48h,靶基因即在細(xì)胞內(nèi)表達(dá),。可依據(jù)不同的實驗?zāi)康模?4-48h后即可進(jìn)行靶基因表達(dá)的檢測等實驗,。2.轉(zhuǎn)染后效率的檢測方法：觀察轉(zhuǎn)染后細(xì)胞熒光情況,；qPCR驗證；WB檢測敲減或過表達(dá)蛋白,。3.轉(zhuǎn)染效率低,，可采取以下兩種方法：1)復(fù)轉(zhuǎn)染，即轉(zhuǎn)染后12-24h再進(jìn)行轉(zhuǎn)染,，前提是該細(xì)胞對脂質(zhì)體的耐受性較好,，轉(zhuǎn)染后細(xì)胞死亡數(shù)較少。2)通過藥篩來殺死未轉(zhuǎn)入成功的細(xì)胞,，前提是該質(zhì)粒帶有物品抗性的基因,。4.電轉(zhuǎn)時，不同的細(xì)胞需要的電壓是不一樣的,，需要做預(yù)實驗,，摸索較佳條件。對于大多數(shù)細(xì)胞而言,，較佳電壓位于250-1250v/cm,。電擊后，應(yīng)該將DNA和細(xì)胞混合液在室溫下放置10min,使細(xì)胞恢復(fù)損傷,。對于轉(zhuǎn)染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質(zhì)體試劑的量會因細(xì)胞密度而異,。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染為什么不能加血清：不同的細(xì)胞及轉(zhuǎn)染試劑要求轉(zhuǎn)染的條件是不同的。較好是在靠前次實驗前做一個預(yù)實驗,，比如：HeLa,，293，CHO，COS7,，MCF－7,，HepG2等細(xì)胞，是否加血清,，對不同的細(xì)胞是有不同的影響的,，有些細(xì)胞是可以有血清的，有些加血清就會受影響,。轉(zhuǎn)染后在6小時左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基，其一因為普通轉(zhuǎn)染試劑對細(xì)胞的毒性作用大,，其二可降低因血清的缺乏引起的細(xì)胞的死亡,。轉(zhuǎn)染時不加血清是防止血清的干擾作用，轉(zhuǎn)染后可適時加入,。加入過早會引起未轉(zhuǎn)染細(xì)胞的優(yōu)勢生長,，過晚會引起較多細(xì)胞死亡?？蓪崟r觀察1/5細(xì)胞變圓的時候加入血清,。因為DNA攝入效率和表達(dá)水平在不同實驗中差異較大，實驗必須很小心,。長沙正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑服務(wù)電話

轉(zhuǎn)染試劑與細(xì)胞不匹配細(xì)胞轉(zhuǎn)染較適合的不是原代細(xì)胞,。寧波細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑推薦廠家

細(xì)胞轉(zhuǎn)染實驗簡介實驗步驟：1、細(xì)胞傳代(1)試驗準(zhǔn)備：200ul/1mlTip頭各一盒(以上物品均需高壓滅菌),，酒精棉球,，廢液缸，試管架,，微量移液器,，記號筆，培養(yǎng)皿,，離心管,。(2)棄掉培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基，用1ml的PBS溶液洗滌兩次,。(3)用Tip頭加入1mlTrypsin液,，消化1分鐘(37。C,，5%CO2),。用手輕拍培養(yǎng)瓶壁，觀察到細(xì)胞完全從壁上脫落下來為止,。(4)加入1ml的含血清培養(yǎng)基終止反應(yīng),。(5)用頭多次吹吸，使細(xì)胞完全分散開。(6)將培養(yǎng)液裝入離心管中,，1000rpm離心5min,。(7)用培養(yǎng)液重懸細(xì)胞，細(xì)胞計數(shù)后選擇0.8X106個細(xì)胞加入一個35mm培養(yǎng)皿,。(8)將合適體積完全培養(yǎng)液加入離心管中,，混勻細(xì)胞后輕輕加入培養(yǎng)皿中，使其均勻分布,。(9)將培養(yǎng)皿轉(zhuǎn)入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),，第二天轉(zhuǎn)染。寧波細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑推薦廠家