密度梯度離心法根據在蔗糖、碘海醇或碘克沙醇等惰性溶液中的浮力密度將外泌體分成特定的層,，目前普遍應用的是蔗糖，這種方法可以成功地將亞細胞成分（例如過氧化物酶體,，線粒體和核內體）分離到密度梯度溶液中的不同層中,。樣品被放置在梯度的頂部，當施加離心力時,，樣品中的顆粒以獨特的速率通過梯度,，該梯度以從上到下的密度增加。樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集,，隨后可以通過分餾收集,，密度梯度超速離心對從蛋白質聚集體和非膜顆粒中分離出外泌體非常有效,。此方法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣,、費時且會造成外泌體損失,。免疫印跡或蛋白質印跡是分析外泌體較常用的方法之一，其原理是外泌體上特異性抗原與抗體結合,。外泌體作為小分子的藥物傳遞載體,。湖南唾液外泌體

外泌體的提取、純化和鑒定：每一個外泌體研究者較初都要為外泌體的分離提取而煩惱,。選擇的分離方式是利用超速離心的方式分離外泌體,，并且可以選用梯度密度離心法得到純度更高的外泌體。另外利用外泌體自身的物理化學性質所研發(fā)的各種市售的外泌體分離提取試劑盒也能達到分離效果,。提取的外泌體的鑒定方式主要是通過形態(tài)學,、粒子大小以及標志蛋白等方式實現的。近來的研究發(fā)現外泌體在比較多生理病理上起著重要的作用,，如免疫中抗原呈遞,、瘤子的生長與遷移、組織損傷的修復等,。不同細胞分泌的外泌體具有不用的組成成分和功能,，可作為疾病診斷的生物標志物。外泌體具有脂質雙層膜結構,，能比較好的保護其包被的物質,，且能靶向特定細胞或組織，因此是一種比較好靶向給藥系統(tǒng),。研究所提取試劑盒銷售外泌體可以將PD-L1轉運至其他PD-L1表達低或沒有PD-L1的細胞,，并可能與PD-1結合。

外泌體中常見的細胞質蛋白是Rabs蛋白,，是鳥苷酸三磷酸酶家族的一種,。它可以調節(jié)外泌體膜與受體細胞的融合，有文獻報道稱RAB4,RAB5和RAB11主要出現在早期以及回收的核內體中,，RAB7和RAB9主要出現在晚期的核內體?，F有大量的研究發(fā)現外泌體中含有40種RAB蛋白。除了RAB蛋白,，外泌體中富含具有外泌體膜交換以及融合作用的膜聯(lián)蛋白（包括膜聯(lián)蛋白1,、2、4,、5,、6、7,、11等）,。外泌體膜上富含參與外泌體運輸的四跨膜蛋白家族（CD63,CD81和CD9)）,、熱休克蛋白家族（(HSP60,HSP70,HSPA5,CCT2和HSP90以及一些細胞特異性的蛋白包括A33（結腸上皮細胞來源）、MHC-Ⅱ(抗原提呈細胞來源),、CD86(抗原提呈細胞來源)以及乳凝集素（不成熟的樹突狀細胞）,。外泌體的提取的方式：超速離心法。

磁珠免疫法分離外泌體：將針對目的抗原的抗體通過生物素-鏈霉親和素連接到磁珠表面,，然后將磁珠與樣品共孵育,，使外泌體特異性結合到磁珠上形成磁珠-外泌體復合物，再用蒸餾水或者PBS沖洗,，結尾用甘氨酸-Tris-HCl溶液洗脫獲得外泌體,。該方法相對于ELISA的好處主要是，珠粒提供了更大的表面積來捕獲外泌體,，從而提高了分離效率,。此外，使用磁珠時,，樣品起始體積沒有上限,，而基于微孔板的ELISA分析的較大樣品體積為100μL，且ELISA洗脫雜質時容易造成孔間交叉污染,。當將磁珠法與金標準外泌體分離方法進行比較時,，磁珠法可分離出更純凈的外泌體，特異性高,、速度更快,，并且不需要昂貴的儀器。另外,，與其他分離方法（如超速離心或超濾）相比,，磁珠法不影響外泌體形態(tài)。但是采用磁珠法時,，外泌體生物活性易受PH和鹽濃度影響,。提取的外泌體的鑒定方式主要是通過形態(tài)學（電子顯微鏡技術）、粒子大小以及標志蛋白等方式實現的,。

外泌體遞送藥物的優(yōu)勢：許多新的候選藥物（例如蛋白質和核酸）在體內環(huán)境中高度不穩(wěn)定,，對診療結果的效果提出了重大挑戰(zhàn)。鑒于與許多當前的納米微粒遞送系統(tǒng)相關的問題,，外泌體作為“自然的遞送系統(tǒng)”允許遞送這些生物分子,。由于外泌體體積小和其本身就是細胞產物，通過外泌體遞送藥物可以避免巨噬細胞的吞噬作用或降解,，還可以在體內長時間循環(huán)，保持效果,。其中,，外泌體能夠穿過血腦屏障以將特定藥物輸送到中樞的神經系統(tǒng)是外泌體遞送藥物的一個明顯優(yōu)勢,。外泌體膜中有跨膜蛋白PGRL、LAMP1,、LAMP2,。外泌體功能在研究初期階段發(fā)現是參與細胞成熟過程中去除不必要的蛋白質。乳液外泌體提取試劑盒方法

選擇的分離方式是利用超速離心的方式分離外泌體,，并且可以選用梯度密度離心法得到純度更高的外泌體,。湖南唾液外泌體

外泌體分離的主要挑戰(zhàn)之一是消除納米級污染物，包括干擾外泌體標志物解析的游離核酸和脂蛋白,。超速離心是目前分離外泌體的主要技術,。盡管如此，它仍難以符合臨床應用所需的標準,，主要是由于該方法得到的外泌體純度不足,，產量較低，完整性欠佳且分離純化操作耗時長,。其他方法,，例如基于聚乙二醇（PEG）的沉淀，磷脂酰絲氨酸親和捕獲,，尺寸排阻色譜法和膜親和捕獲,，近年來已經出現在特定的應用中，但是只適用于特定場景,。近來,，非對稱流場-流分離方法已被用于從細胞和瘤子培養(yǎng)基中高分辨率地分選EV亞群，但其通量受到繁瑣的樣品制備程序的影響,。單一分析耗時的過程也限制了其普遍的應用,。因此，目前亟需開發(fā)創(chuàng)新技術以提高外泌體分離純化的效率,，純度,，產量，速度和耐用性,?；诔瑸V的技術提供了潛在的有前途的替代方法，但它們也有缺點,。在切向流過濾中,，使進料流平行于多孔膜流動，以避免堵塞,。然而,，盡管已實現使用切向流過濾從大量條件細胞培養(yǎng)基中濃縮外泌體，但受制于其一次性模塊的成本高,，高剪切應力,，難以處理小體積樣品等因素而難以應用于臨床分析,。湖南唾液外泌體

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