轉(zhuǎn)染的注意事項：有血清時的轉(zhuǎn)染血清一度曾被認為會降低轉(zhuǎn)染效率,，但只要在DNA-陽離子脂質(zhì)體復合物形成時不含血清,，在轉(zhuǎn)染過程中是可以使用血清的,。轉(zhuǎn)染過程在兩步中需要使用培養(yǎng)基做為稀釋液：在DNA-陽離子脂質(zhì)體復合物準備過程以及復合物同細胞接觸過程,。在開始準備DNA和陽離子脂質(zhì)體試劑稀釋液時要使用無血清的培養(yǎng)基，因為血清會影響復合物的形成,。但在復合物形成后,，在加入細胞中前可以加入血清。陽離子脂質(zhì)體和DNA的較佳量在使用血清時會有所不同,，因此如果你想在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進行優(yōu)化,。大部分細胞可以在無血清培養(yǎng)基中幾個小時內(nèi)保持健康,。對于對血清缺乏比較敏感的細胞,，可以使用一些營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基，或者在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用血清,。選擇傳代次數(shù)較低并處于對數(shù)生長期的細胞進行轉(zhuǎn)染,。青島細胞高效轉(zhuǎn)染試劑

如何有效提高細胞轉(zhuǎn)染實驗效率：1.選擇合適的轉(zhuǎn)染試劑不同細胞系轉(zhuǎn)染效率通常不同，但細胞系的選擇通常是根據(jù)實驗的需要,，因此在轉(zhuǎn)染實驗前應根據(jù)實驗要求和細胞特性選擇適合的轉(zhuǎn)染試劑,。每種轉(zhuǎn)染試劑都會提供一些已經(jīng)成功轉(zhuǎn)染的細胞株列表和文獻，通過這些資料可選擇較適合實驗設計的轉(zhuǎn)染試劑,。當然,，較適合的是高效、低毒,、方便,、廉價的轉(zhuǎn)染試劑。2.保持較佳的細胞狀態(tài)一般低的細胞代數(shù)（<50）能確?；蛐筒蛔?。較適合轉(zhuǎn)染的細胞是經(jīng)過幾次傳代后達到指數(shù)生長期的細胞，細胞生長旺盛,，較容易轉(zhuǎn)染,。細胞培養(yǎng)在實驗室中保存數(shù)月和數(shù)年后會經(jīng)歷突變，總?cè)旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化,。這會導致和轉(zhuǎn)染相關的細胞行為的變化,。也就是說同一種系的細胞株,，在各實驗室不同培養(yǎng)條件下，其生物學性狀發(fā)生不同程度的改變,，導致其轉(zhuǎn)染特性也發(fā)生變化,。因此，如果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染效率降低,，可以試著轉(zhuǎn)染新鮮培養(yǎng)的細胞以恢復較佳結(jié)果,。寧波細胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪家好來指示細胞中目標基因是否存在，這樣的報告基因一般可以在轉(zhuǎn)染后一兩天內(nèi)檢測到,。

轉(zhuǎn)染的注意事項：培養(yǎng)基中的物品物品,，比如青霉素和鏈霉素，是影響轉(zhuǎn)染的培養(yǎng)基添加物,。這些物品一般對于真核細胞無毒,，但陽離子脂質(zhì)體試劑增加了細胞的通透性，使物品可以進入細胞,。這降低了細胞的活性,，導致轉(zhuǎn)染效率低。所以,，在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中不能使用物品,，甚至在準備轉(zhuǎn)染前進行細胞鋪板時也要避免使用物品。這樣,，在轉(zhuǎn)染前也不必潤洗細胞,。對于穩(wěn)定轉(zhuǎn)染，不要在選擇性培養(yǎng)基中使用青霉素和鏈霉素,，因為這些物品是GENETICIN選擇性物品的競爭性克制劑,。另外，為了保證無血清培養(yǎng)基中細胞的健康生長,，使用比含血清培養(yǎng)基更少的物品量,。大多數(shù)已建立的細胞系都是非整倍體，原代培養(yǎng)包括了表達不同基因組合的細胞的混合物,。細胞培養(yǎng)在實驗室中保存數(shù)月和數(shù)年后會經(jīng)歷突變,，總?cè)旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化，這會導致和轉(zhuǎn)染相關的細胞行為的變化,。如果隨時間發(fā)現(xiàn)這種變化,，融化一管新鮮的細胞可能會恢復原先的轉(zhuǎn)染活性。比如,，新鮮融化的NIH3T3細胞比傳代8次的細胞表現(xiàn)出更高的轉(zhuǎn)染效率,，融化細胞的進一步傳代并沒有降低轉(zhuǎn)染效率。因此,，如果觀察到轉(zhuǎn)染效率降低,，可以試著轉(zhuǎn)染新鮮培養(yǎng)的細胞以恢復較佳結(jié)果

細胞轉(zhuǎn)染常用步驟：1.轉(zhuǎn)染試劑的準備①將400ul去核酸酶水加入管中,，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物,。②震蕩后將試劑放在－20攝氏度保存,，使用前還需震蕩。2.選擇合適的混合比例(1：1－1：2/脂質(zhì)體體積：DNA質(zhì)量)來轉(zhuǎn)染細胞,。在一個轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基,。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA，震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑,，再次震蕩,。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘。4.吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,，用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次,。5.加入混合液，將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時,。6.到時后,，根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液，之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24－48小時,。震蕩后將試劑放在－20攝氏度保存,，使用前還需震蕩。

細胞轉(zhuǎn)染的常用方法：磷酸鈣共沉淀原理：該法可用于瞬時或穩(wěn)定轉(zhuǎn)染,。然而因其對pH,、溫度和緩沖液鹽濃度的微小變化十分敏感,，所得結(jié)果容易出現(xiàn)差異,，且對許多類型的細胞培養(yǎng)物(尤其是原代細胞)具有細胞毒性，轉(zhuǎn)染效率較差,。實驗步驟：將核酸與氯化鈣在磷酸鹽緩沖液中混合,，同時控制好pH、溫度等條件→室溫孵育,，生成濃縮DNA的極小不溶性顆粒沉淀→將顆粒型沉淀分散到細胞中,，促進DNA粘附在細胞表面→共沉淀通過內(nèi)吞作用進入胞漿→分析細胞瞬時基因表達或者選擇穩(wěn)定性傳染。對大多數(shù)細胞而言,，均需要在轉(zhuǎn)染當天或前現(xiàn)在鋪板,，第二天上午進行轉(zhuǎn)染。武漢正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑

瞬時轉(zhuǎn)染與穩(wěn)定轉(zhuǎn)染常規(guī)轉(zhuǎn)染技術根據(jù)基因表達時間的長短可分為兩大類,。青島細胞高效轉(zhuǎn)染試劑

細胞轉(zhuǎn)染常用步驟：1.轉(zhuǎn)染試劑的準備①將400ul去核酸酶水加入管中,，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物,。②震蕩后將試劑放在－20攝氏度保存,，使用前還需震蕩,。2.選擇合適的混合比例(1：1－1：2/脂質(zhì)體體積：DNA質(zhì)量)來轉(zhuǎn)染細胞。在一個轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基,。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA,，震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑，再次震蕩,。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘,。4.吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基，用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次,。5.加入混合液,，將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。6.到時后,，根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液,，之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24－48小時青島細胞高效轉(zhuǎn)染試劑