膜片鉗技術∶從一小片（約幾平方微米）膜獲取電子學方面信息的技術,，即保持跨膜電壓恒定——電壓鉗位,，從而測量通過膜離子電流大小的技術,。通過研究離子通道的離子流,，從而了解離子運輸,、信號傳遞等信息,?；驹恚豪秘摲答侂娮泳€路,，將微電極前列所吸附的一個至幾個平方微米的細胞膜的電位固定在一定水平上,，對通過通道的微小離子電流作動態(tài)或靜態(tài)觀察，從而研究其功能,。研究離子通道的一種電生理技術,，是施加負壓將玻璃微電極的前列（開口直徑約1μm）與細胞膜緊密接觸，形成高阻抗封接,，可以精確記錄離子通道微小電流,。能制備成細胞貼附、內面朝外和外面朝內三種單通道記錄方式，以及另一種記錄多通道的全細胞方式,。膜片鉗技術實現(xiàn)了小片膜的孤立和高阻封接的形成,，由于高阻封接使背景噪聲水平**降低，相對地增寬了記錄頻帶范圍,，提高了分辨率,。另外，它還具有良好的機械穩(wěn)定性和化學絕緣性,。而小片膜的孤立使對單個離子通道進行研究成為可能,。早期的研究多使用雙電極電壓鉗技術作細胞內電活動的記錄。德國膜片鉗專題

高阻封接問題的解決不僅改善了電流記錄性能,，還隨之出現(xiàn)了研究通道電流的多種膜片鉗方式,。根據(jù)不同的研究目的，可制成不同的膜片構型,。(1)細胞吸附膜片(cell-attachedpatch)將兩次拉制后經加熱拋光的微管電極置于清潔的細胞膜表面上,，形成高阻封接，在細胞膜表面隔離出一小片膜,，既而通過微管電極對膜片進行電壓鉗制,，分辨測量膜電流，稱為細胞貼附膜片,。由于不破壞細胞的完整性,，這種方式又稱為細胞膜上的膜片記錄。此時跨膜電位由玻管固定電位和細胞電位決定,。因此,，為測定膜片兩側的電位，需測定細胞膜電位并從該電位減去玻管電位,。從膜片的通道活動看,，這種形式的膜片是極穩(wěn)定的，因細胞骨架及有關代謝過程是完整的,，所受的干擾小,。日本膜片鉗細胞功能特性全自動膜片鉗技術的出現(xiàn)標志著膜片鉗技術已經發(fā)展到了一個嶄新階段。

光遺傳學調控技術是近幾年正在迅速發(fā)展的一項整合了光學,、基因操作技術,、電生理等多學科交叉的生物技術。NatureMethods雜志將此技術評為"Methodoftheyear2010"[19],；美國麻省理工學院科技評述（MITTechnologyReview,，2010）在其總結性文章"Theyearinbiomedicine"中指出：光遺傳學調控技術現(xiàn)已經迅速成為生命科學，特別是神經和心臟研究領域中熱門的研究方向之一,。目前這一技術正在被全球幾百家從事心臟學,、神經科學和神經工程研究的實驗室使用,，幫助科學家們深入理解大腦的功能，進而為深刻認識神經,、精神疾病,、心血管疾病的發(fā)病機理并研發(fā)針對疾病干預和的新技術。

內面向外膜片(inside-outpatch)高阻封接形成后,，在將微管電極輕輕提起,，使其與細胞分離，電極端形成密封小泡,，在空氣中短暫暴露幾秒鐘后,，小泡破裂再回到溶液中就得到“內面向外”膜片,。此時膜片兩側的膜電位由固定電位和電壓脈沖控制,。浴槽電位是地電位，膜電位等于玻管電位的負值,。如放大器的電流監(jiān)視器輸出是非反向的,，則輸出將與膜電流(Im)的負值相等。外面向外膜片(out-sidepatch)高阻封接形成后,，繼續(xù)以負壓抽吸,，膜片破裂再將玻管慢慢地從細胞表面垂直地提起，斷端游離部分自行融合成脂質雙層,，此時高阻封接仍然存在,。而膜外側面接觸浴槽液。這種膜片形式應測膜片電阻,，并消除漏電流和電容電流,。整個過程要當心是否形成囊泡。如果浴槽保持地電位水平,，膜電位即與玻管電位相等,。如放大器是非反向的，放大器的輸出將與Im值相等,。神經遞質的釋放,、腺體的分泌、肌肉的運動,、學習和記憶,。

資料分析：一般電學性質∶通過I/V關系計算得到單通道電導，觀察通道有無整流,。通過離子選擇性,、翻轉電位或其它通道的條件初步確定通道類型。通道動力學分析∶開放時間,、開放概率,、關閉時間,、通道的時間依賴性失活、開放與關閉類型（簇狀猝發(fā),，Burst）樣開放與閃動樣短暫關閉（flickering）,，化學門控性通道的開、關速率常數(shù)等數(shù)據(jù),。藥理學研究∶研究的藥物,，阻斷劑、激動劑或其它調制因素對通道活動的影響情況,。綜合分析得出結淪,。由此形成了一門細胞學科—電生理學，即是用電生理的方法來記錄和分析細胞產生電的大小和規(guī)律的科學,。日本膜片鉗細胞功能特性

膜片鉗技術已成為研究離子通道的"金標準",。德國膜片鉗專題

把膜電位鉗位電壓調到-80--100mV，再用鉗位放大器的控制鍵把全細胞瞬態(tài)充電電流調定至零位（EPC-10的控制鍵稱為C-slow和C-series;Axopatch200標為全細胞電容和系列電阻）,。寫下細胞的電容值Cc和未補整的系列電阻值Rs,，用于消除全細胞瞬態(tài)電流，計算鉗位的固定時間（即RsCc）,，然啟根據(jù)歐姆定律從測定脈沖電流的振幅算出細胞的電阻RC,。緩慢調節(jié)Rs旋鈕注意測定脈沖反應的變化，逐漸增加補整的比例,。如果RS補整非常接近振蕩的閾值,，RS或Cc的微細變化都會達到震蕩的閾值，產生電壓的振蕩而使細胞受損,。因此應當在RS補整水平寫不穩(wěn)定閾值之間留有10%-20%的余地為安全,。準備資料收集和脈沖序列的測定。德國膜片鉗專題

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