細(xì)胞轉(zhuǎn)染為什么不能加血清：不同的細(xì)胞及轉(zhuǎn)染試劑要求轉(zhuǎn)染的條件是不同的。較好是在靠前次實(shí)驗(yàn)前做一個(gè)預(yù)實(shí)驗(yàn),，比如：HeLa,，293，CHO,，COS7,，MCF－7，HepG2等細(xì)胞,，是否加血清,，對不同的細(xì)胞是有不同的影響的，有些細(xì)胞是可以有血清的,，有些加血清就會(huì)受影響,。轉(zhuǎn)染后在6小時(shí)左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基，其一因?yàn)槠胀ㄞD(zhuǎn)染試劑對細(xì)胞的毒性作用大,，其二可降低因血清的缺乏引起的細(xì)胞的死亡,。轉(zhuǎn)染時(shí)不加血清是防止血清的干擾作用，轉(zhuǎn)染后可適時(shí)加入,。加入過早會(huì)引起未轉(zhuǎn)染細(xì)胞的優(yōu)勢生長,，過晚會(huì)引起較多細(xì)胞死亡?？蓪?shí)時(shí)觀察1/5細(xì)胞變圓的時(shí)候加入血清,。這會(huì)導(dǎo)致和轉(zhuǎn)染相關(guān)的細(xì)胞行為的變化。長沙細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑生產(chǎn)廠家

轉(zhuǎn)染的注意事項(xiàng)：有血清時(shí)的轉(zhuǎn)染血清一度曾被認(rèn)為會(huì)降低轉(zhuǎn)染效率,，但只要在DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物形成時(shí)不含血清,，在轉(zhuǎn)染過程中是可以使用血清的。轉(zhuǎn)染過程在兩步中需要使用培養(yǎng)基做為稀釋液：在DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物準(zhǔn)備過程以及復(fù)合物同細(xì)胞接觸過程,。在開始準(zhǔn)備DNA和陽離子脂質(zhì)體試劑稀釋液時(shí)要使用無血清的培養(yǎng)基,，因?yàn)檠鍟?huì)影響復(fù)合物的形成。但在復(fù)合物形成后,，在加入細(xì)胞中前可以加入血清,。陽離子脂質(zhì)體和DNA的較佳量在使用血清時(shí)會(huì)有所不同，因此如果你想在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進(jìn)行優(yōu)化,。大部分細(xì)胞可以在無血清培養(yǎng)基中幾個(gè)小時(shí)內(nèi)保持健康,。對于對血清缺乏比較敏感的細(xì)胞，可以使用一些營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基,，或者在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用血清,。徐州細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪里買在轉(zhuǎn)染過程中是可以使用血清的。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染常用步驟：1.轉(zhuǎn)染試劑的準(zhǔn)備①將400ul去核酸酶水加入管中,，震蕩10秒鐘,，溶解脂狀物,。②震蕩后將試劑放在－20攝氏度保存，使用前還需震蕩,。2.選擇合適的混合比例(1：1－1：2/脂質(zhì)體體積：DNA質(zhì)量)來轉(zhuǎn)染細(xì)胞,。在一個(gè)轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA,，震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑,，再次震蕩。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘,。4.吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,，用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。5.加入混合液,，將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個(gè)小時(shí),。6.到時(shí)后，根據(jù)細(xì)胞種類決定是否移除混合液,，之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24－48小時(shí),。

細(xì)胞電轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)的幾點(diǎn)建議：1.電場強(qiáng)度要合適合適的電場強(qiáng)度對于電轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)非常重要，電場強(qiáng)度不能過高,，過高會(huì)增加細(xì)胞的死亡率,；也不能過低，過低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔,。不同細(xì)胞系具有不同的較佳場強(qiáng)值，實(shí)驗(yàn)前應(yīng)測定所轉(zhuǎn)染細(xì)胞系的較佳電場強(qiáng)度,。2.細(xì)胞狀態(tài)要好用于電轉(zhuǎn)的細(xì)胞一般選取處于對數(shù)生長期的細(xì)胞（15代以內(nèi),，傳代后2d）。因?yàn)樘幱趯?shù)生長期的細(xì)胞分裂旺盛,，表面結(jié)構(gòu)致密比穩(wěn)定期的細(xì)胞差,，電轉(zhuǎn)后，細(xì)胞膜的恢復(fù)能力強(qiáng),，而且處于有絲分裂期的細(xì)胞更容易接受外源DNA.在一般實(shí)驗(yàn)室中很難普及,。其它物理和化學(xué)介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染方法，則各有其特點(diǎn),。

如何高效率實(shí)現(xiàn)細(xì)胞轉(zhuǎn)染：陽離子脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑脂質(zhì)轉(zhuǎn)染試劑,，以其適用宿主范圍廣，操作簡便,，對細(xì)胞毒性小,，轉(zhuǎn)染效率高受到研究者們的青睞。脂質(zhì)體（liposome）是一種人工膜,，在水相中形成具有雙分子層結(jié)構(gòu)的球形封閉囊泡,。脂質(zhì)體可以和帶負(fù)電荷的核酸結(jié)合后重新形成復(fù)合物,，當(dāng)復(fù)合物接近細(xì)胞膜時(shí)，通過內(nèi)吞作用形成內(nèi)體（endosomes）進(jìn)入細(xì)胞,，通過緩沖液的作用以及脂質(zhì)與內(nèi)體膜融合,，增大內(nèi)體的內(nèi)部滲透壓，使內(nèi)體結(jié)構(gòu)破壞,，釋放出核酸,。隨后DNA復(fù)合物被釋放進(jìn)入細(xì)胞核內(nèi)。對于普通細(xì)胞系,，一般的瞬時(shí)轉(zhuǎn)染方法多采用脂質(zhì)體法,。利用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法較重要的就是防止其毒性，因此脂質(zhì)體與質(zhì)粒的比例,，細(xì)胞密度以及轉(zhuǎn)染的時(shí)間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要因素,，通過實(shí)驗(yàn)優(yōu)化合適的轉(zhuǎn)染條件對于轉(zhuǎn)染效率的提高很重要。蛋白表達(dá)和培養(yǎng)基的選擇哺乳動(dòng)物細(xì)胞系合成可溶的,。青島正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑產(chǎn)品介紹

震蕩后將試劑放在－20攝氏度保存,，使用前還需震蕩。長沙細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑生產(chǎn)廠家

細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)簡介：實(shí)驗(yàn)材料與器材：1,、材料293T細(xì)胞,、MyoD表達(dá)質(zhì)粒和EGFP表達(dá)質(zhì)粒、DMEM培養(yǎng)基,、鏈霉素/青霉素(雙抗),、FCS(小牛血清)、PBS(磷酸鹽緩沖溶液),、胰酶/EDTA消化液,、轉(zhuǎn)染試劑(TransFast)2、器材20ul/200ul/1ml微量移液器和Tip頭酒精燈,、廢液缸,、血球計(jì)數(shù)板、渦旋振蕩器,、恒溫水浴箱,、臺式離心機(jī)、35mm培養(yǎng)皿,、轉(zhuǎn)染管,、15ml離心管、觀察用倒置顯微鏡熒光顯微鏡和CCD,。利用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法較重要的就是防止其毒性,，因此脂質(zhì)體與質(zhì)粒的比例，細(xì)胞密度以及轉(zhuǎn)染的時(shí)間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要問題,，通過實(shí)驗(yàn)摸索的合適轉(zhuǎn)染條件對于效率的提高有巨大的作用,。長沙細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑生產(chǎn)廠家