1937年，Hodgkin和Huxley在烏賊巨大神經(jīng)軸突細(xì)胞內(nèi)實(shí)現(xiàn)細(xì)胞內(nèi)電記錄,，獲1963年Nobel獎(jiǎng)1946年,，凌寧和Gerard創(chuàng)造拉制出前列直徑小于1μm的玻璃微電極,，并記錄了骨骼肌的電活動(dòng),。玻璃微電極的應(yīng)用使的電生理研究進(jìn)行了重命性的變化,。Voltageclamp（電壓鉗技術(shù)）由Cole和Marmont發(fā)明,，并很快由Hodgkin和Huxley完善,，真正開始了定量研究,，建立了H一H模型（膜離子學(xué)說），是近代興奮學(xué)說的基石,。1948年,，Katz利用細(xì)胞內(nèi)微電極技術(shù)記錄到了終板電位;1969年，又證實(shí)N—M接觸后的Ach以"量子式"釋放,，獲1976年Nobel獎(jiǎng),。1976年，德國(guó)的Neher和Sakmann發(fā)明PatchClamp（膜片鉗）,。并在蛙橫紋肌終板部位記錄到乙酰膽堿引起的通道電流,。膜片鉗技術(shù)已成為研究離子通道的"金標(biāo)準(zhǔn)"。全細(xì)胞膜片鉗離子電流

全細(xì)胞記錄構(gòu)型(whole-cellrecording) 高阻封接形成后,，繼續(xù)以負(fù)壓抽吸使電極管內(nèi)細(xì)胞膜破裂,，電極胞內(nèi)液直接相通，而與浴槽液絕緣,，這種形式稱為“全細(xì)胞”記錄,。它既可記錄膜電位又可記錄膜電流。其中膜電位可在電流鉗情況下記錄,，或?qū)⒉９苓B到標(biāo)準(zhǔn)高阻微電極放大器上記錄,。在電壓鉗條件下記錄到的大細(xì)胞全細(xì)胞電流可達(dá)nA級(jí)，全細(xì)胞鉗的串聯(lián)電阻(玻管和細(xì)胞內(nèi)部之間的電阻)應(yīng)當(dāng)補(bǔ)償,。任何流經(jīng)膜的電流均流經(jīng)這一電阻,，所引起的電壓降將使玻管電壓不同于細(xì)胞內(nèi)的真正電位。電流愈大,，愈需對(duì)串聯(lián)電阻進(jìn)行補(bǔ)償,。全細(xì)胞鉗應(yīng)注意細(xì)胞必需合理的小到其電流能被放大器測(cè)到的范圍(25～50nA)。減少串聯(lián)電阻的方法是玻管尖要比單通道記錄大,。全細(xì)胞膜片鉗離子電流在細(xì)胞膜的電學(xué)模型中,，膜電容和膜電導(dǎo)構(gòu)成了一個(gè)并聯(lián)回路。

膜片鉗技術(shù)的創(chuàng)立取代了電壓鉗技術(shù),，是細(xì)胞電生理研究的一個(gè)飛躍,，使得離子通道的研究,，從宏觀深入到微觀，使昔日的“肉湯生理學(xué)(brothphysiology)”與“閃電生理學(xué)(lightningphysiology)”在分子水平上結(jié)合起來,，使人們對(duì)膜通道的認(rèn)識(shí)耳目一新。當(dāng)前,，生理學(xué),、生物物理學(xué)、生物化學(xué),、分子生物學(xué)和藥理學(xué)等多種學(xué)科正在把膜片鉗技術(shù)和膜通道蛋白重組技術(shù),、同位素示蹤技術(shù)和光譜技術(shù)等非電生理技術(shù)結(jié)合起來，協(xié)同對(duì)離子通道進(jìn)行較全的研究,。不少實(shí)驗(yàn)室已經(jīng)將基因工程與膜片鉗技術(shù)結(jié)合起來,，把通道蛋白有目的地重組于人工膜中進(jìn)行研究。設(shè)想將合成的通道蛋白分子接種入機(jī)體以替換有缺陷和異常的通道的功能而達(dá)到的目的,。

在形成高阻抗封接后,，記錄實(shí)驗(yàn)結(jié)果之前，通常要根據(jù)實(shí)驗(yàn)的要求進(jìn)行參數(shù)補(bǔ)償,，以期獲得符合實(shí)際的結(jié)果,。需要注意的是，應(yīng)恰當(dāng)設(shè)置放大器的帶寬,，例如10kHz,，這樣在電流監(jiān)測(cè)端將觀察不到超越此頻帶以外的無用信息。膜片鉗實(shí)驗(yàn)難度大,、技術(shù)要求高,，要掌握有關(guān)技術(shù)和方法雖不是很困難的事，但要從一大批的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)中,，經(jīng)過處理和分析,，得出有意義、有價(jià)值的結(jié)果和結(jié)論,，就顯得不那么容易,，有許多需要注意和考慮的問題，包括減少噪音,，避免電極前端的污染,，提高封接成功率，具體實(shí)驗(yàn)過程中還需要考慮如何選取記錄模式,，為記錄特定離子電流如何選擇電極內(nèi),、外液，如何選擇阻斷劑,、激動(dòng)劑,，如何進(jìn)行正確的數(shù)據(jù)采集等許多更為復(fù)雜的問題,，還需在科研實(shí)踐中不斷地探索和解決。神經(jīng)遞質(zhì)的釋放,、腺體的分泌,、肌肉的運(yùn)動(dòng)、學(xué)習(xí)和記憶,。

與藥物作用有關(guān)的心肌離子通道,，心肌細(xì)胞通過各種離子通道對(duì)膜電位和動(dòng)作電位穩(wěn)態(tài)的維持而保持正常的功能。近年來,，國(guó)外學(xué)者在人類心肌細(xì)胞離子通道特性的研究中取得了許多進(jìn)展,，使得心肌藥理學(xué)實(shí)驗(yàn)由動(dòng)物細(xì)胞模型向人心肌細(xì)胞成為可能。對(duì)離子通道生理與病理情況下作用機(jī)制的研究,，通過對(duì)各種生理或病理情況下細(xì)胞膜某種離子通道特性的研究,，了解該離子的生理意義及其在疾病過程中的作用機(jī)制。如對(duì)鈣離子在腦缺血神經(jīng)細(xì)胞損害中作用機(jī)制的研究表明,，缺血性腦損害過程中,，Ca2+介導(dǎo)現(xiàn)象起非常重要的作用，缺血缺氧使Ca2+通道開放,，過多的Ca2+進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)就出現(xiàn)Ca2+超載,，導(dǎo)致神經(jīng)元及細(xì)胞膜損害，膜轉(zhuǎn)運(yùn)功能障礙,，嚴(yán)重的可使神經(jīng)元壞死,。細(xì)胞是動(dòng)物和人體的基本組成單元，細(xì)胞與細(xì)胞內(nèi)的通信,是依靠其膜上的離子通道進(jìn)行的,。德國(guó)高通量全自動(dòng)膜片鉗系統(tǒng)

通過膜片鉗放大器的控制鍵將微電極的連接電位（junction potentials）調(diào)至零位,。全細(xì)胞膜片鉗離子電流

電壓鉗的缺點(diǎn)∶電壓鉗技術(shù)目前主要用于巨火細(xì)胞的全細(xì)胞電流研究，特別在分子克隆的卵母細(xì)胞表達(dá)電流的鑒定中發(fā)揮其它技術(shù)不能替代的作用,。但也有其致命的弱點(diǎn)1,、微電極需刺破細(xì)胞膜進(jìn)入細(xì)胞，以致造成細(xì)胞漿流失,，破壞了細(xì)胞生理功能的完整性;2,、不能測(cè)定單一通道電流。因?yàn)殡妷恒Q制的膜面積很大,，包含著大量隨機(jī)開放和關(guān)閉著的通道,，而且背景噪音大，往往掩蓋了單一通道的電流,。3,、對(duì)體積小的細(xì)胞（如哺乳類***元，直徑在10-30μm之間）進(jìn)行電壓鉗實(shí)驗(yàn),，技術(shù)上有更大的困難,。由于電極需插入細(xì)胞,，不得不將微電極的前列做得很細(xì)，如此細(xì)的前列致使電極阻抗很大,，常常是60～-8OMΩ或120～150MΩ（取決于不同的充灌液）,。這樣大的電極阻抗不利于作細(xì)胞內(nèi)電流鉗或電壓鉗記錄時(shí)在短時(shí)間（0.1μs）內(nèi)向細(xì)胞內(nèi)注入電流，達(dá)到鉗制膜電壓或膜電流之目的,。再者,，在小細(xì)胞上插入的兩根電極可產(chǎn)生電容而降低測(cè)量電壓電極的反應(yīng)能力。全細(xì)胞膜片鉗離子電流

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