細(xì)胞轉(zhuǎn)染的注意事項(xiàng)：轉(zhuǎn)染是將外源性基因?qū)爰?xì)胞內(nèi)的一種專門(mén)技術(shù)。分為物理介導(dǎo)方法：電穿孔法,、顯微注射和基因,；化學(xué)介導(dǎo)方法：如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染方法,、和多種陽(yáng)離子物質(zhì)介導(dǎo)的技術(shù),；生物介導(dǎo)方法：有較為原始的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)染，和現(xiàn)在比較多見(jiàn)的各種細(xì)菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù),。理想細(xì)胞轉(zhuǎn)染方法,，應(yīng)該具有轉(zhuǎn)染效率高,、細(xì)胞毒性小等優(yōu)點(diǎn)。細(xì)菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù),，是目前轉(zhuǎn)染效率較高的方法,，同時(shí)具有細(xì)胞毒性很低的優(yōu)勢(shì)。但是細(xì)菌轉(zhuǎn)染方法的準(zhǔn)備程序復(fù)雜,，常常對(duì)細(xì)胞類型有很強(qiáng)的選擇性,，在一般實(shí)驗(yàn)室中很難普及。其它物理和化學(xué)介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染方法,，則各有其特點(diǎn),。需要指出的一點(diǎn)，無(wú)論采用哪種轉(zhuǎn)染技術(shù),，要獲得較優(yōu)的轉(zhuǎn)染結(jié)果,，可能都需要對(duì)轉(zhuǎn)染條件進(jìn)行優(yōu)化。影響轉(zhuǎn)染效率的因素很多,，從細(xì)胞類型,、細(xì)胞培養(yǎng)條件和細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)到轉(zhuǎn)染方法的操作細(xì)節(jié)。選擇傳代次數(shù)較低并處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)染,。無(wú)錫珠海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑

如何提高細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)效率：優(yōu)化細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)密切觀察您的細(xì)胞;確保它們狀態(tài)良好,。在開(kāi)始轉(zhuǎn)染細(xì)胞之前，先制定一個(gè)適當(dāng)?shù)姆N板方案,，使細(xì)胞密度從轉(zhuǎn)染開(kāi)始到結(jié)束都保持較佳狀態(tài),。增加成功幾率—細(xì)胞是轉(zhuǎn)染過(guò)程中的一個(gè)關(guān)鍵元素，它可以是影響結(jié)果的一致性和質(zhì)量的較重要的變量,。此外,，還常用促有絲分裂刺激物(如，細(xì)菌轉(zhuǎn)化,，生長(zhǎng)因子,，條件培養(yǎng)基，以及滋養(yǎng)細(xì)胞)來(lái)活化原代培養(yǎng)細(xì)胞,。貼壁細(xì)胞相比較懸浮細(xì)胞—在轉(zhuǎn)染效率方面貼壁細(xì)胞和懸浮細(xì)胞之間的差異明顯,。天生趨于懸浮的細(xì)胞(如HL 60，Jurkat)非常難以轉(zhuǎn)染,。相反,，天生為貼壁的細(xì)胞(如HEK，CHO)則可適應(yīng)懸浮生長(zhǎng)的條件,。濟(jì)南細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家直銷(xiāo)建議選擇50%~80%區(qū)間密度進(jìn)行細(xì)胞轉(zhuǎn)染,。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染的常用方法：磷酸鈣共沉淀原理：該法可用于瞬時(shí)或穩(wěn)定轉(zhuǎn)染。然而因其對(duì)pH、溫度和緩沖液鹽濃度的微小變化十分敏感,，所得結(jié)果容易出現(xiàn)差異,，且對(duì)許多類型的細(xì)胞培養(yǎng)物(尤其是原代細(xì)胞)具有細(xì)胞毒性，轉(zhuǎn)染效率較差,。實(shí)驗(yàn)步驟：將核酸與氯化鈣在磷酸鹽緩沖液中混合,，同時(shí)控制好pH、溫度等條件 → 室溫孵育,，生成濃縮DNA的極小不溶性顆粒沉淀 → 將顆粒型沉淀分散到細(xì)胞中,，促進(jìn)DNA粘附在細(xì)胞表面 → 共沉淀通過(guò)內(nèi)吞作用進(jìn)入胞漿 → 分析細(xì)胞瞬時(shí)基因表達(dá)或者選擇穩(wěn)定性傳染。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染：(1)轉(zhuǎn)染試劑的準(zhǔn)備A.將400ul去核酸酶水加入管中,，震蕩10秒鐘,，溶解脂狀物。B.震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存,，使用前還需震蕩,，。(2)選擇合適的混合比例(1：1-1：2/脂質(zhì)體體積：DNA質(zhì)量)來(lái)轉(zhuǎn)染細(xì)胞,。在一個(gè)轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無(wú)血清培養(yǎng)基,。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA，震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑,，再次震蕩,。(3)將混合液在室溫放置10—15分鐘。(4)吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,，用PBS或者無(wú)血清培養(yǎng)基清洗一次,。(5)加入混合液，將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個(gè)小時(shí),。(6)到時(shí)后,，根據(jù)細(xì)胞種類決定是否移除混合液，之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時(shí),。較適合轉(zhuǎn)染的細(xì)胞是經(jīng)過(guò)幾次傳代后達(dá)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞,。

轉(zhuǎn)染的注意事項(xiàng)：細(xì)胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細(xì)胞密度根據(jù)不同的細(xì)胞類型或應(yīng)用而異,。一般轉(zhuǎn)染時(shí),，貼壁細(xì)胞密度為70%-90%，懸浮細(xì)胞密度為2×106-4×106細(xì)胞/ml時(shí)效果較好,。確保轉(zhuǎn)染時(shí)細(xì)胞沒(méi)有長(zhǎng)滿或處于靜止期,。因?yàn)檗D(zhuǎn)染效率對(duì)細(xì)胞密度很敏感，所以在不同實(shí)驗(yàn)間保持一個(gè)基本的傳代步驟很重要,。鋪板細(xì)胞數(shù)目的增加可以增加轉(zhuǎn)染活性和細(xì)胞產(chǎn)量,。在三種不同密度進(jìn)行細(xì)胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的，CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應(yīng)增加了,。這些結(jié)果說(shuō)明,，對(duì)于轉(zhuǎn)染相同量的DNA所需的較佳陽(yáng)離子脂質(zhì)體試劑的量會(huì)因細(xì)胞密度而異。對(duì)于原代細(xì)胞,，可用促有絲分裂刺激物進(jìn)行細(xì)胞活化,。蘇州正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷(xiāo)廠家

大部分外源DNA會(huì)被核酸酶降解或隨細(xì)胞分裂而稀釋。無(wú)錫珠海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑

如何有效提高細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)效率：1.選擇高效的轉(zhuǎn)染方法不同轉(zhuǎn)染試劑有不同的轉(zhuǎn)染方法,，但大多大同小異,。轉(zhuǎn)染時(shí)應(yīng)跟據(jù)具體轉(zhuǎn)染試劑推薦的方法，但也要注意,，因不同實(shí)驗(yàn)室培養(yǎng)的細(xì)胞性質(zhì)不同,，質(zhì)粒定量差異，操作手法上的差異等,，其轉(zhuǎn)染效果可能不同,，應(yīng)根據(jù)實(shí)驗(yàn)室的具體條件來(lái)確定較佳轉(zhuǎn)染條件。2.確保所構(gòu)建載體的質(zhì)量,。轉(zhuǎn)染載體的構(gòu)建（細(xì)菌載體,，質(zhì)粒DNA，RNA,，PCR產(chǎn)物,，寡核苷酸等）也影響轉(zhuǎn)染結(jié)果。細(xì)菌載體對(duì)特定宿主細(xì)胞傳染效率較高,，但不同細(xì)菌載體有其特定的宿主,，有的還要求特定的細(xì)胞周期，如逆轉(zhuǎn)錄細(xì)菌需侵染分裂期的宿主細(xì)胞,，此外還需考慮一些安全問(wèn)題（如基因污染）,。除載體構(gòu)建外，載體的形態(tài)及大小對(duì)轉(zhuǎn)染效率也有不同的影響,，如前面提到的超螺旋及線性DNA對(duì)瞬時(shí)和穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的影響,。如果基因產(chǎn)物對(duì)細(xì)胞有毒性作用，轉(zhuǎn)染也很難進(jìn)行,，因此選擇組成或可調(diào)控,，強(qiáng)度合適的啟動(dòng)子也很重要，同時(shí)做空載體及其它基因的相同載體構(gòu)建的轉(zhuǎn)染正對(duì)照可排除毒性影響的干擾,。無(wú)錫珠海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑