資料分析：一般電學性質(zhì)∶通過I/V關系計算得到單通道電導，觀察通道有無整流,。通過離子選擇性,、翻轉電位或其它通道的條件初步確定通道類型。通道動力學分析∶開放時間,、開放概率,、關閉時間、通道的時間依賴性失活、開放與關閉類型（簇狀猝發(fā),，Burst）樣開放與閃動樣短暫關閉（flickering）,，化學門控性通道的開,、關速率常數(shù)等數(shù)據(jù)。藥理學研究∶研究的藥物,，阻斷劑、激動劑或其它調(diào)制因素對通道活動的影響情況,。綜合分析得出結淪。膜片鉗技術實現(xiàn)了小片膜的孤立和高阻封接的形成,，增寬了記錄頻帶范圍，提高了分辨率,。日本全自動膜片鉗研究

高阻封接問題的解決不僅改善了電流記錄性能,，還隨之出現(xiàn)了研究通道電流的多種膜片鉗方式。根據(jù)不同的研究目的,，可制成不同的膜片構型,。(1)細胞吸附膜片(cell-attachedpatch)將兩次拉制后經(jīng)加熱拋光的微管電極置于清潔的細胞膜表面上,，形成高阻封接,，在細胞膜表面隔離出一小片膜,，既而通過微管電極對膜片進行電壓鉗制，分辨測量膜電流,，稱為細胞貼附膜片。由于不破壞細胞的完整性,，這種方式又稱為細胞膜上的膜片記錄。此時跨膜電位由玻管固定電位和細胞電位決定,。因此，為測定膜片兩側的電位,，需測定細胞膜電位并從該電位減去玻管電位。從膜片的通道活動看,，這種形式的膜片是極穩(wěn)定的,，因細胞骨架及有關代謝過程是完整的，所受的干擾小,。芬蘭單電極膜片鉗市場價膜片鉗記錄技術與較早的單電極電壓鉗位相比進步了很多，尤其在單離子通道鉗位記錄方面,。

膜片鉗技術原理：膜片鉗技術是用玻璃微電極吸管把只含1-3個離子通道,、面積為幾個平方微米的細胞膜通過負壓吸引封接起來（見右圖）,，由于電極前列與細胞膜的高阻封接,，在電極前列籠罩下的那片膜事實上與膜的其他部分從電學上隔離,，因此，此片膜內(nèi)開放所產(chǎn)生的電流流進玻璃吸管,，用一個極為敏感的電流監(jiān)視器（膜片鉗放大器）測量此電流強度,，就單一離子通道電流膜片鉗技術的建立,，對生物學科學特別是神經(jīng)科學是一資有重大意義的變革,。這是一種以記錄通過離子通道的離子電流來反映細胞膜單一的（或多個的離子通道分子活動的技術,。些技術的出現(xiàn)自然將細胞水平和分子水平的生理學研究聯(lián)系在一起,，同時又將神經(jīng)科學的不同分野必然地融匯在一起,，改變了既往各個分野互不聯(lián)系、互不滲透,，阻礙人們較全認識能力的弊端。這一技術的發(fā)現(xiàn)和基因克隆技術并架齊驅,，給生命科學研究帶來了巨大的前進動力,。

電壓鉗的缺點∶電壓鉗技術目前主要用于巨火細胞的全細胞電流研究，特別在分子克隆的卵母細胞表達電流的鑒定中發(fā)揮其它技術不能替代的作用,。但也有其致命的弱點1,、微電極需刺破細胞膜進入細胞，以致造成細胞漿流失,，破壞了細胞生理功能的完整性;2、不能測定單一通道電流,。因為電壓鉗制的膜面積很大，包含著大量隨機開放和關閉著的通道,，而且背景噪音大,，往往掩蓋了單一通道的電流,。3,、對體積小的細胞（如哺乳類***元,，直徑在10-30μm之間）進行電壓鉗實驗,，技術上有更大的困難,。由于電極需插入細胞,，不得不將微電極的前列做得很細,，如此細的前列致使電極阻抗很大,，常常是60～-8OMΩ或120～150MΩ（取決于不同的充灌液）,。這樣大的電極阻抗不利于作細胞內(nèi)電流鉗或電壓鉗記錄時在短時間（0.1μs）內(nèi)向細胞內(nèi)注入電流,，達到鉗制膜電壓或膜電流之目的,。再者,，在小細胞上插入的兩根電極可產(chǎn)生電容而降低測量電壓電極的反應能力。在細胞膜的電興奮過程中,，脂質(zhì)層膜電容的反應是被動的,，其電流電壓曲線是線性的,。

電壓鉗技術,，是20世紀初由Cole發(fā)明，Hodgkin和Huxley完善,，其設計的主要目的是為了證明動作電位的產(chǎn)生機制，即動作電位的峰電位是由于膜對鈉的通透性發(fā)生了一過性的增大過程,。但當時沒有直接測定膜通透性的方法，于是就用膜對某種離子的電導來**該種離子的通透性,，膜電導測定的依據(jù)是電學中的歐姆定律,，如膜的Na電導GNa與電化學驅動力（Em-ENa）和膜電流INa的關系GNa=INa/（Em-ENa）.因此可通過測量膜電流，再利用歐姆定律來計算膜電導,，但是,，利用膜電流來計算膜電導時,，記錄膜電流期間的膜電位必須保持不變,，否則膜電流的變化就不能**膜電導的變化。這一條件是利用電壓鉗技術實現(xiàn)的,。下張幻燈中的右邊兩張圖是Hodgkin和Huxley在半個世紀以前利用電壓鉗記錄的搶烏賊的動作電位和動作電位過程中的膜電流的變化圖,，他們的實驗***證明參與動作電位的離子流由Na，k，漏（Cl）三種成分組成,。并對這些離子流進行了定量分析,。這一技術對闡明動作電位的本質(zhì)和離子通道的的研究做出了極大的貢獻。Neher創(chuàng)膜片鉗的膜電容檢測與碳纖電極電化學檢測聯(lián)合運用的技術,。雙電極膜片鉗高阻抗封接

膜片鉗技術是用玻璃微電極吸管把只含1-3個離子通道、面積為幾個平方微米的細胞膜通過負壓吸引封接起來,。日本全自動膜片鉗研究

膜片鉗技術與其它技術相結合Neher等**將膜片鉗技術與Fura2熒光測鈣技術結合,，同時進行如細胞內(nèi)熒光強度,、細胞膜離子通道電流及細胞膜電容等多指標變化的快速交替測定，這樣便可得出同一事件過程中,，多種因素各自的變化情況,，進而可分析這些變化間的相互關系。Neher將可光解出鈣離子的鈣螯合物引入膜片鉗技術,，進而可以定量研究鈣離子濃度與分泌率的關系及比較大分泌率等指標,。他又創(chuàng)膜片鉗的膜電容檢測與碳纖電極電化學檢測聯(lián)合運用的技術。之后又將光電聯(lián)合檢測技術與碳纖電極電化學檢測技術首先結合起來,。這種結合既能研究分泌機制，又能鑒別分泌物質(zhì),，還能互相彌補各單種方法的不足,。Eberwine等于1991年首先將膜片鉗技術與RT-PCR技術結合起來運用，可對形態(tài)相似而電活動不同的結果作出分子水平的解釋,，從此開始了膜片鉗與分子生物學技術相結合的時代∶基因重組技術,，膜通道蛋白重建技術。日本全自動膜片鉗研究

因斯蔻浦(上海)生物科技有限公司專注技術創(chuàng)新和產(chǎn)品研發(fā),，發(fā)展規(guī)模團隊不斷壯大。一批專業(yè)的技術團隊,，是實現(xiàn)企業(yè)戰(zhàn)略目標的基礎,，是企業(yè)持續(xù)發(fā)展的動力。公司業(yè)務范圍主要包括：nVista,，nVoke,，3D bioplotte，invivo等,。公司奉行顧客至上、質(zhì)量為本的經(jīng)營宗旨,，深受客戶好評,。一直以來公司堅持以客戶為中心、nVista,，nVoke，3D bioplotte,，invivo市場為導向，重信譽,，保質(zhì)量,，想客戶之所想,，急用戶之所急，全力以赴滿足客戶的一切需要,。