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德國多通道膜片鉗離子電流

來源: 發(fā)布時間:2023-02-24

膜片鉗技術(shù)∶從一小片(約幾平方微米)膜獲取電子學(xué)方面信息的技術(shù),即保持跨膜電壓恒定——電壓鉗位,,從而測量通過膜離子電流大小的技術(shù),。通過研究離子通道的離子流,從而了解離子運輸,、信號傳遞等信息,。基本原理:利用負反饋電子線路,,將微電極前列所吸附的一個至幾個平方微米的細胞膜的電位固定在一定水平上,,對通過通道的微小離子電流作動態(tài)或靜態(tài)觀察,從而研究其功能,。研究離子通道的一種電生理技術(shù),,是施加負壓將玻璃微電極的前列(開口直徑約1μm)與細胞膜緊密接觸,形成高阻抗封接,,可以精確記錄離子通道微小電流,。能制備成細胞貼附、內(nèi)面朝外和外面朝內(nèi)三種單通道記錄方式,以及另一種記錄多通道的全細胞方式,。膜片鉗技術(shù)實現(xiàn)了小片膜的孤立和高阻封接的形成,,由于高阻封接使背景噪聲水平**降低,相對地增寬了記錄頻帶范圍,,提高了分辨率,。另外,它還具有良好的機械穩(wěn)定性和化學(xué)絕緣性,。而小片膜的孤立使對單個離子通道進行研究成為可能,。膜片鉗80%的工夫在于刺備細胞。德國多通道膜片鉗離子電流

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細胞是動物和人體的基本組成單元,,細胞與細胞內(nèi)的通信,是依靠其膜上的離子通道進行的,,離子和離子通道是細胞興奮的基礎(chǔ),亦即產(chǎn)生生物電信號的基礎(chǔ),,生物電信號通常用電學(xué)或電子學(xué)方法進行測量,。由此形成了一門細胞學(xué)科———電生理學(xué)(electrophysiology),即是用電生理的方法來記錄和分析細胞產(chǎn)生電的大小和規(guī)律的科學(xué),。早期的研究多使用雙電極電壓鉗技術(shù)作細胞內(nèi)電活動的記錄?,F(xiàn)代膜片鉗技術(shù)是在電壓鉗技術(shù)的基礎(chǔ)上發(fā)展起來的。美國單通道膜片鉗技術(shù)脂質(zhì)層電導(dǎo)很低,,由于雙分子層的結(jié)構(gòu)特點,,形成了細胞的膜電容,通道蛋白開閉狀況主要決定了膜電導(dǎo)的數(shù)值,。

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電壓鉗的原理∶用兩根前列直徑0.5um的電極插入細胞內(nèi),,一根電極用作記錄電極以記錄跨膜電位,用另一根電極作為電流注入電極,,以固定膜電位,。從而實現(xiàn)固定膜電位的同時記錄膜電流。電位記錄電極引導(dǎo)的膜電位(Vm)輸入電壓鉗放大器的負輸入端,,而人為控制的指令電位(Vc)輸入正輸入端,,放大器的正負輸入端子等電位,向正輸入端子施加指令電位(Vc)時,,經(jīng)過短路負端子可使膜片等電較,,即Vm=Vc,從而達到電位鉗制的目的,,并可維持一定的時間,。Vc的不同變化將導(dǎo)致Vm的變化,從而引起細胞膜上電壓依賴性離子通道的開放,,通道開放引起的離子流反過來又引起Vm的變化,致使Vm≠Vc,,Vc與Vm的任何差值都會導(dǎo)致放大器有電壓輸出,,將相反極性的電流注入細胞,,以使Vc=Vm,注入電流的大小與跨膜離子流相等,,但方向相反,。因而注入的電流被認為是標本興奮時的跨膜電流值(通道電流)。

細胞是動物和人體的基本單元,,細胞與細胞內(nèi)的通信是依靠其膜上的離子通道進行的,,離子和離子通道是細胞興奮的基礎(chǔ),亦即產(chǎn)生生物電信號的基礎(chǔ),,生物電信號通常用電學(xué)或電子學(xué)方法進行測量,。由此形成了一門細胞學(xué)科--電生理學(xué)。膜片鉗技術(shù)已成為研究離子通道的黃金標準,。電壓門控性離子通道:膜上通道蛋白的帶點集團在膜電位改變時,,在電場的作用下,重新分布導(dǎo)致通道的關(guān)閉,,同時有電荷移動,,稱為門控電流。配體門控離子通道:神經(jīng)遞質(zhì)(如乙酰膽堿),、ji素等與通道蛋白上的特定位點結(jié)合,,引起蛋白構(gòu)像的改變,導(dǎo)致通道的打開,。膜片鉗記錄技術(shù)與較早的單電極電壓鉗位相比進步了很多,,尤其在單離子通道鉗位記錄方面。

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實驗溶液浸溶細胞溶液和微電極玻璃管內(nèi)的填充液成分對全細胞膜片鉗記錄也是很重要的內(nèi)容,,這關(guān)系到封接的容易程度,、細胞存活狀態(tài)及膜電位的狀態(tài)等。在實驗記錄過程中,,尤其是神經(jīng)生物學(xué)實驗,,需要迅速更換細胞浸溶液濃度以免受體敏感性降低(desensitization)或需要模擬快速突觸反應(yīng)的壽命。原則上細胞的浸溶液成分或玻璃管內(nèi)填充液成分應(yīng)該與細胞外或細胞內(nèi)間質(zhì)的成分相似,,實際研究中,,為了探討某些通道或電位特性,對這些實驗溶液的成分或濃度會作必要調(diào)整,,沒有哪種溶液是理想的,。膜片鉗技術(shù)已成為研究離子通道的"金標準"。日本膜片鉗細胞功能特性

這是一種以記錄通過離子通道的離子電流來反映細胞膜單一的或多個的離子通道分子活動的技術(shù),。德國多通道膜片鉗離子電流

1976年德國馬普生物物理化學(xué)研究所Neher和Sakmann在青蛙肌細胞上用雙電極鉗制膜電位的同時,,記錄到ACh的單通道離子電流,從而產(chǎn)生了膜片鉗技術(shù)。1980年Sigworth等在記錄電極內(nèi)施加5-50cmH2O的負壓吸引,,得到10-100GΩ的高阻封接(Giga-seal),,明顯降低了記錄時的噪聲實現(xiàn)了單根電極既鉗制膜片電位又記錄單通道電流的突破。1981年Hamill和Neher等對該技術(shù)進行了改進,,引進了膜片游離技術(shù)和全細胞記錄技術(shù),,從而使該技術(shù)更趨完善,具有1pA的電流靈敏度,、1μm的空間分辨率和10μs的時間分辨率,。1983年10月,《Single-ChannelRecording》一書問世,,奠定了膜片鉗技術(shù)的里程碑,。Sakmann和Neher也因其杰出的工作和突出貢獻,榮獲1991年諾貝爾醫(yī)學(xué)和生理學(xué)獎,。德國多通道膜片鉗離子電流

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