膜片鉗技術(shù)的發(fā)展∶全自動膜片鉗技術(shù)（Automated patch clamp technique）的出現(xiàn)標志著膜片鉗技術(shù)已經(jīng)發(fā)展到了一個嶄新階段，從這個意義上說,，前面所講的膜片鉗技術(shù)我們稱之為傳統(tǒng)膜片鉗技術(shù)（ Traditional patch clamp technique）,，傳統(tǒng)膜片鉗技術(shù)每次只能記錄一個細胞（或一對細胞），對實驗人員來說是一項耗時耗力的工作,，不適合在藥物開發(fā)初期和中期進行大量化合物的篩選,，也不適合需要記錄火量細胞的基礎(chǔ)實驗研究。全自動膜片鉗技術(shù)的出現(xiàn)在很大程度上解決了這些問題,，它不僅通量高,，一次能記錄幾個甚至幾十個細胞，而且從找細胞,、形成封接,、破膜等整個實驗操作實現(xiàn)了自動化，免除了這些操作的復雜與困難,。這兩個優(yōu)點使得膜片鉗技術(shù)的工作效率提高了!全自動膜片鉗技術(shù)采用的標本必須是懸浮細胞,，像腦片這類標本無法采用。此外,，全自動膜片鉗技術(shù)只能進行全細胞記錄模式,、穿孔膜片鉗記錄模式以及細胞貼附式單通道記錄模式，而不能進行其他模式的記錄,。Neher創(chuàng)膜片鉗的膜電容檢測與碳纖電極電化學檢測聯(lián)合運用的技術(shù),。高通量全自動膜片鉗哪家好

1976年德國馬普生物物理化學研究所Neher和Sakmann在青蛙肌細胞上記錄記錄到AChjihuo的單通道離子電流1980年Sigworth等用負壓吸引，得到10-100GΩ的高阻封接（Giga-sea1）,，降低了記錄時的噪聲1981年Hamill和Neher等引進了膜片游離技術(shù)和全細胞記錄技術(shù)1983年10月,，《Single-ChannelRecording》一書問世，奠定了膜片鉗技術(shù)的里程碑,。膜片鉗技術(shù)原理膜片鉗技術(shù)是用玻璃微電極接觸細胞,，形成吉歐姆（GΩ）阻抗，使得與電極前列開口處相接的細胞膜的膜片與周圍在電學上絕緣,，在此基礎(chǔ)上固定電位,，對此膜片上的離子通道的離子電流（pA級）進行監(jiān)測記錄的方法。進口腦片膜片鉗系統(tǒng)在細胞膜的電興奮過程中,，脂質(zhì)層膜電容的反應(yīng)是被動的,，其電流電壓曲線是線性的。

電壓鉗的原理∶用兩根前列直徑0.5um的電極插入細胞內(nèi),，一根電極用作記錄電極以記錄跨膜電位,，用另一根電極作為電流注入電極,，以固定膜電位。從而實現(xiàn)固定膜電位的同時記錄膜電流,。電位記錄電極引導的膜電位（Vm）輸入電壓鉗放大器的負輸入端,，而人為控制的指令電位（Vc）輸入正輸入端，放大器的正負輸入端子等電位,，向正輸入端子施加指令電位（Vc）時,，經(jīng)過短路負端子可使膜片等電較，即Vm=Vc,，從而達到電位鉗制的目的,，并可維持一定的時間。Vc的不同變化將導致Vm的變化,，從而引起細胞膜上電壓依賴性離子通道的開放,，通道開放引起的離子流反過來又引起Vm的變化，致使Vm≠Vc,，Vc與Vm的任何差值都會導致放大器有電壓輸出,，將相反極性的電流注入細胞，以使Vc=Vm,，注入電流的大小與跨膜離子流相等,，但方向相反。因而注入的電流被認為是標本興奮時的跨膜電流值（通道電流）,。

對電極持續(xù)施加一個1mV,、10～50ms的階躍脈沖刺激，電極入水后電阻約4～6MΩ,，此時在計算機屏幕顯示框中可看到測試脈沖產(chǎn)生的電流波形,。開始時增益不宜設(shè)得太高，一般可在1～5mV/pA,，以免放大器飽和,。由于細胞外液與電極內(nèi)液之間離子成分的差異造成了液結(jié)電位，故一般電極剛?cè)胨畷r測試波形基線并不在零線上,，須首先將保持電壓設(shè)置為0mV，并調(diào)節(jié)“電極失調(diào)控制“使電極直流電流接近于零,。用微操縱器使電極靠近細胞,，當電極前列與細胞膜接觸時封接電阻指示Rm會有所上升，將電極稍向下壓,，Rm指示會進一步上升,。通過細塑料管向電極內(nèi)稍加負壓，細胞膜特性良好時,，Rm一般會在1min內(nèi)快速上升,，直至形成GΩ級的高阻抗封接,。一般當Rm達到100MΩ左右時，電極前列施加輕微負電壓(-30～-10mV)有助于GΩ封接的形成,。此時的現(xiàn)象是電流波形再次變得平坦,，使電極超極化由-40到-90mV，有助于加速形成封接,。為證實GΩ封接的形成,，可以增加放大器的增益，從而可以觀察到除脈沖電壓的首尾兩端出現(xiàn)電容性脈沖前列電流之外,，電流波形仍呈平坦狀,。全細胞膜片鉗記錄是應(yīng)用較早，也是普遍的鉗位技術(shù),。

細胞是動物和人體的基本單元,，細胞與細胞內(nèi)的通信是依靠其膜上的離子通道進行的，離子和離子通道是細胞興奮的基礎(chǔ),，亦即產(chǎn)生生物電信號的基礎(chǔ),，生物電信號通常用電學或電子學方法進行測量。由此形成了一門細胞學科--電生理學,。膜片鉗技術(shù)已成為研究離子通道的黃金標準,。電壓門控性離子通道：膜上通道蛋白的帶點集團在膜電位改變時，在電場的作用下,，重新分布導致通道的關(guān)閉,，同時有電荷移動，稱為門控電流,。配體門控離子通道：神經(jīng)遞質(zhì)（如乙酰膽堿）,、ji素等與通道蛋白上的特定位點結(jié)合，引起蛋白構(gòu)像的改變,，導致通道的打開,。由于電極前列與細胞膜的高阻封接，在電極前列籠罩下的那片膜事實上與膜的其他部分從電學上隔離,。進口雙電極膜片鉗解決方案

這是一種以記錄通過離子通道的離子電流來反映細胞膜單一的或多個的離子通道分子活動的技術(shù),。高通量全自動膜片鉗哪家好

過去認為，膜片鉗只能在培養(yǎng)細胞或酶解的細胞上進行,，這樣得到的細胞膜表面比較光滑,，才能夠形成高阻封接，但缺點是組織的正常三維結(jié)構(gòu)被破壞,，并且對神經(jīng)中樞內(nèi)突觸特有的傳遞機能的研究無法展開,。于是，一些學者建立了組織切片膜片鉗技術(shù)（Slicepatch）,，就能在哺乳動物腦片制備上做全細胞記錄,。1992年,，在腦片膜片鉗技術(shù)上，美國Ferster實驗室報道在在體貓的視皮層用膜片鉗全細胞記錄研究了視刺激誘發(fā)的興奮性和***性突觸后電位相互影響及節(jié)律性膜電位的變化規(guī)律,。1993年,，德國的Dodt和Sakmann合作，利用紅外電視顯微鏡監(jiān)視,，使得膜片鉗記錄不但能夠在神經(jīng)元胞體及其樹突上進行,，而且可同時在這兩個不同的部位作膜片鉗記錄。高通量全自動膜片鉗哪家好

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