不同的全自動膜片鉗技術(shù)所采用的原理如PopulationPatchClamp技術(shù)∶同SealChip技術(shù)一樣，完全摒齊了玻璃電極,，而是采用PatchPlate平面電極芯片,。該芯片含有多個小室，每個小室中含有很多1-2μm的封接孔,。在記錄時,，每個小室中封接成功的細胞|數(shù)目較多，獲得的記錄是這些細胞通道電流的平均值,。因此,，不同小室其通道電流的一致性非常好，變異系數(shù)很小,。美國Axon（MDS）公司采用這一技術(shù)研發(fā)出了全自動高通量的lonWorksQuattro系統(tǒng),，成為藥物初期篩選的金標準滔博生物TOP-Bright專注基于多種離子通道靶點的化合物體外篩選,服務(wù)于全球藥企的膜片鉗公司,快速獲得實驗結(jié)果,專業(yè)團隊,7*39小時隨時人工在線咨詢.在青蛙肌細胞上用雙電極鉗制膜電位的同時，記錄到ACh啟動的單通道離子電流,，從而產(chǎn)生了膜片鉗技術(shù),。美國雙分子層膜片鉗電流鉗制

膜片鉗技術(shù)是當前研究細胞膜電流及離子通道的蕞重要的技術(shù)。從技術(shù)層面來解釋的話,，膜片鉗技術(shù)(patchclamp)是指利用鉗制電壓或者電流的方法(通常為鉗制電壓)來記錄細胞膜離子通道電活動的微電極技術(shù),。膜片鉗技術(shù)的原理為：使用一個一頭尖一頭粗的錐狀玻璃管，管中設(shè)有微電極,，管的前列直徑約1.5~3.0μm,，通過負壓吸引使前列口與細胞膜形成千兆歐姆級的阻抗封接，前列口內(nèi)的細胞膜區(qū)域與周圍其他區(qū)域形成了電學(xué)分隔,，然后人工鉗制此片區(qū)域細胞膜的電位,，即可達到對膜片上離子通道電流的監(jiān)測與記錄。日本可升級膜片鉗高阻抗封接準確,、穩(wěn)定,、高效，膜片鉗技術(shù)讓您的研究更上一層樓,！

鈣成像技術(shù)被廣泛應(yīng)用于實時監(jiān)測神經(jīng)元,、心肌以及多種細胞胞內(nèi)鈣離子的變化,，從而檢測神經(jīng)元、心肌的活動情況,。這些技術(shù)是人們觀測神經(jīng)以及多種細胞活動為直接的手段,，現(xiàn)已發(fā)展為生命科學(xué)研究的熱點，也是國家自然科學(xué)基金等鼓勵申報的重要領(lǐng)域,。光遺傳學(xué)調(diào)控技術(shù)是近幾年正在迅速發(fā)展的一項整合了光學(xué),、基因操作技術(shù)、電生理等多學(xué)科交叉的生物技術(shù),。NatureMethods雜志將此技術(shù)評為"Methodoftheyear2010"[19],；美國麻省理工學(xué)院科技評述（MITTechnologyReview，2010）在其總結(jié)性文章"Theyearinbiomedicine"中指出：光遺傳學(xué)調(diào)控技術(shù)現(xiàn)已經(jīng)迅速成為生命科學(xué),，特別是神經(jīng)和心臟研究領(lǐng)域中熱門的研究方向之一,。目前這一技術(shù)正在被全球幾百家從事心臟學(xué)、神經(jīng)科學(xué)和神經(jīng)工程研究的實驗室使用,，幫助科學(xué)家們深入理解大腦的功能,，進而為深刻認識神經(jīng)、精神疾病,、心血管疾病的發(fā)病機理并研發(fā)針對疾病干預(yù)和的新技術(shù),。滔博生物TOP-Bright專注基于多種離子通道靶點的化合物體外篩選,服務(wù)于全球藥企的膜片鉗公司,快速獲得實驗結(jié)果,專業(yè)團隊,7*58小時隨時人工在線咨詢.

離子通道結(jié)構(gòu)研究∶目前，絕大多數(shù)離子通道的一級結(jié)構(gòu)得到了闡明但根本的還是要搞清楚各種離子通道的三維結(jié)構(gòu),，在這方面,，美國的二位科學(xué)家彼得阿格雷和羅德里克麥金農(nóng)做出了一些開創(chuàng)性的工作，他們到用X光繞射方法得到了K離子通道的三維結(jié)構(gòu),，二位因此獲得2003年諾貝系化學(xué)獎,。有關(guān)離子通道結(jié)構(gòu)不是本PPT的重點，可參考楊寶峰的<離子通道藥理學(xué)>和Hill的

電壓鉗技術(shù),，是20世紀初由Cole發(fā)明，Hodgkin和Huxley完善,，其設(shè)計的主要目的是為了證明動作電位的產(chǎn)生機制,，即動作電位的峰電位是由于膜對鈉的通透性發(fā)生了一過性的增大過程。但當時沒有直接測定膜通透性的方法，于是就用膜對某種離子的電導(dǎo)來**該種離子的通透性,，膜電導(dǎo)測定的依據(jù)是電學(xué)中的歐姆定律,，如膜的Na電導(dǎo)GNa與電化學(xué)驅(qū)動力（Em-ENa）和膜電流INa的關(guān)系GNa=INa/（Em-ENa）.因此可通過測量膜電流，再利用歐姆定律來計算膜電導(dǎo),，但是,，利用膜電流來計算膜電導(dǎo)時，記錄膜電流期間的膜電位必須保持不變,，否則膜電流的變化就不能**膜電導(dǎo)的變化,。這一條件是利用電壓鉗技術(shù)實現(xiàn)的。下張幻燈中的右邊兩張圖是Hodgkin和Huxley在半個世紀以前利用電壓鉗記錄的搶烏賊的動作電位和動作電位過程中的膜電流的變化圖,，他們的實驗***證明參與動作電位的離子流由Na，k,，漏（Cl）三種成分組成,。并對這些離子流進行了定量分析。這一技術(shù)對闡明動作電位的本質(zhì)和離子通道的的研究做出了極大的貢獻,。滔博生物TOP-Bright專注基于多種離子通道靶點的化合物體外篩選,服務(wù)于全球藥企的膜片鉗公司,快速獲得實驗結(jié)果,專業(yè)團隊,7*34小時隨時人工在線咨詢.由于電極前列與細胞膜的高阻封接,，在電極前列籠罩下的那片膜事實上與膜的其他部分從電學(xué)上隔離。日本可升級膜片鉗高阻抗封接

膜片鉗記錄不但能夠在神經(jīng)元胞體及其樹突上進行,，而且可同時在這兩個不同的部位作膜片鉗記錄,。美國雙分子層膜片鉗電流鉗制

對電極持續(xù)施加一個1mV、10～50ms的階躍脈沖刺激,，電極入水后電阻約4～6MΩ,，此時在計算機屏幕顯示框中可看到測試脈沖產(chǎn)生的電流波形。開始時增益不宜設(shè)得太高,，一般可在1～5mV/pA,，以免放大器飽和。由于細胞外液與電極內(nèi)液之間離子成分的差異造成了液結(jié)電位,，故一般電極剛?cè)胨畷r測試波形基線并不在零線上,，須首先將保持電壓設(shè)置為0mV，并調(diào)節(jié)“電極失調(diào)控制“使電極直流電流接近于零,。用微操縱器使電極靠近細胞,，當電極前列與細胞膜接觸時封接電阻指示Rm會有所上升，將電極稍向下壓,，Rm指示會進一步上升,。通過細塑料管向電極內(nèi)稍加負壓，細胞膜特性良好時,，Rm一般會在1min內(nèi)快速上升,，直至形成GΩ級的高阻抗封接。一般當Rm達到100MΩ左右時，電極前列施加輕微負電壓(-30～-10mV)有助于GΩ封接的形成,。此時的現(xiàn)象是電流波形再次變得平坦,，使電極超極化由-40到-90mV，有助于加速形成封接,。為證實GΩ封接的形成,，可以增加放大器的增益，從而可以觀察到除脈沖電壓的首尾兩端出現(xiàn)電容性脈沖前列電流之外,，電流波形仍呈平坦狀,。滔博生物TOP-Bright專注基于多種離子通道靶點的化合物體外篩選,服務(wù)于全球藥企的膜片鉗公司,快速獲得實驗結(jié)果,專業(yè)團隊,7*55小時隨時人工在線咨詢.美國雙分子層膜片鉗電流鉗制