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外泌體的提取,、分離方法：梯度密度離心法,。研究發(fā)現(xiàn)，外泌體的密度在1.1~1.19kg·L-1之間,，因此,，可以采用密度梯度離心法來分離外泌體。該方法是將超速離心結合蔗糖密度梯度或蔗糖墊結合,，原理是先除去非囊泡物質(zhì),，再通過梯度密度濃縮提取外泌體，該方法可以得到相對較為純凈的外泌體,。傳統(tǒng)的梯度密度方法通常需要離心16h,，但是2012年，研究者[15]使用了62~90h才分離出某些確切囊泡,，因此,，該方法可能不足以沉淀所有的外泌體。如果離心時間不充足,，污染物質(zhì)可能和外泌體保持在相同的密度層,，特別是這個密度范圍又比較寬。寧波正規(guī)外泌體提取試劑直銷價外泌體提?。好庖叻蛛x技術,。

人體內(nèi)多種細胞及體液均可分泌外泌體，包括內(nèi)皮細胞,、免疫細胞,、血小板、平滑肌細胞等,。當其由宿主細胞被分泌到受體細胞中時,，外泌體可通過其攜帶的蛋白質(zhì)、核酸,、脂類等來調(diào)節(jié)受體細胞的生物學活性,。外泌體介導的細胞間通訊主要通過以下三種方式：一是外泌體膜蛋白可以與靶細胞膜蛋白結合，進而靶細胞細胞內(nèi)的信號通路,。二是在細胞外基質(zhì)中,，外泌體膜蛋白可以被蛋白酶剪切,，剪切的碎片可以作為配體與細胞膜上的受體結合，從而細胞內(nèi)的信號通路,。有報道稱一些外泌體膜上蛋白在其來源細胞膜上未能檢測出,。三是外泌體膜可以與靶細胞膜直接融合，非選擇性的釋放其所含的蛋白質(zhì),、mRNA以及microRNA,。

外泌體的提取方法：1.超速離心法（差速離心）。超離法是較常用的外泌體純化手段,，采用低速離心,、高速離心交替進行，可分離到大小相近的囊泡顆粒,。超離法因操作簡單,，獲得的囊泡數(shù)量較多而廣受歡迎，但過程比較費時,，且回收率不穩(wěn)定（可能與轉子類型有關）,，純度也受到質(zhì)疑；此外,，重復離心操作還有可能對囊泡造成損害,，從而降低其質(zhì)量。2.密度梯度離心,。在超速離心力作用下,，使蔗糖溶液形成從低到高連續(xù)分布的密度階層，是一種區(qū)帶分離法,。通過密度梯度離心,，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高,，但步驟繁瑣,，耗時，對離心時間極為敏感,。外泌體的分離純化一直是科研工作者關注的問題,，獲得高純度的外泌體對后續(xù)的研究至關重要。

外泌體（exosomes）是活細胞經(jīng)過"內(nèi)吞-融合-外排"等一系列調(diào)控過程而形成的膜性囊泡,，來源于晚期核內(nèi)體(也稱為多囊泡體),，直徑約為30-150nm，密度在1.13-1.21g/ml,，天然存在于血液,、唾液、尿液及母乳等體液中,，同時外泌體也存在于組織和細胞間隙中,。人體中幾乎所有類型的細胞均能產(chǎn)生外泌體，人體中大約有1014個外泌體,，大約平均每個細胞產(chǎn)生1000-10000個,。外泌體中含有核酸（DNA、miRNA,、lncRNA,、mRNA、tRF等）,、蛋白和脂類,，在細胞間物質(zhì)和信息轉導中發(fā)揮重要作用，研究表明其在干細胞,、免疫調(diào)控,、瘤轉移、血管生成以及生物標志物等領域都發(fā)揮著不可替代的作用由于這些核酸被囊膜包裹而被保護,，穩(wěn)定性高,，不易降解。外泌體提取試劑哪家好

用無菌針管吸取上層含有外泌體的液體,，置于80℃儲存?zhèn)溆?。寧波正?guī)外泌體提取試劑直銷價

外泌體提取：尺寸排阻色譜,。尺寸排阻色譜（Size-exclusionchromatography,，SEC）是基于大小而非分子量實現(xiàn)分離大分子。該技術應用填充多孔聚合物微球的柱子,，分子根據(jù)其直徑通過微球,，半徑小的分子需要更長的時間才能通過色譜柱的孔隙遷移，而大分子則從色譜柱中更早地洗脫,。尺寸排阻色譜可以精確分離大小分子,。此外，可以將不同的洗脫溶液應用于該方法,。與離心方法相比,，色譜分離已被證明具有更多優(yōu)勢，因為通過色譜分離的外泌體不受剪切力的影響,，這可能會改變囊泡的結構,。目前，SEC是一種普遍接受的分離血液和尿液中外泌體的技術,。不過,，該方法耗時較長，不適合大量樣本處理,。寧波正規(guī)外泌體提取試劑直銷價