細(xì)胞傳代的方法都有哪些：根據(jù)不同的細(xì)胞采取不同的方法,。貼壁生長(zhǎng)的細(xì)胞用消化法傳代,；部分貼壁生長(zhǎng)的細(xì)胞用直接吹打即可傳代,；懸浮生長(zhǎng)的細(xì)胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代,，或用自然沉降法吸除上清后，再吹打,。原代培養(yǎng)的開(kāi)始傳代應(yīng)注意的問(wèn)題,？細(xì)胞沒(méi)有生長(zhǎng)到足以覆蓋瓶底壁的大部分表面以前，不要急于傳代,；原代培養(yǎng)時(shí)細(xì)胞多為混雜生長(zhǎng),，不同的細(xì)胞有不同的消化時(shí)間，因此要根據(jù)需要注意觀察及時(shí)處理,，并根據(jù)不同細(xì)胞對(duì)胰蛋白酶的耐受時(shí)間而分離和純化所需要的細(xì)胞,；吹打細(xì)胞時(shí)動(dòng)作要輕巧盡可能減少對(duì)細(xì)胞的損傷；開(kāi)始傳代時(shí)細(xì)胞接種數(shù)量要多一些,，使細(xì)胞能盡快適應(yīng)新環(huán)境而利于細(xì)胞生存和增值,；隨消化分離而脫落的組織塊也可一并傳入新的培養(yǎng)瓶,。較為嚴(yán)格地說(shuō)是指成功傳代之前的培養(yǎng)，此時(shí)的細(xì)胞保持原有細(xì)胞的基本性質(zhì),。成都正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒廠家供應(yīng)

原代細(xì)胞的獲?。?.培養(yǎng)時(shí)間無(wú)論是酶消化法還是組織塊法，取樣后培養(yǎng)時(shí)間較少需要一周以上的時(shí)間,，期間可換液或者傳代,。2.換液時(shí)間無(wú)論酶消化法還是組織塊法，在培養(yǎng)期間需要隨時(shí)關(guān)注細(xì)胞的生長(zhǎng)狀況,，需觀察其是否貼壁,，是否污染，組織塊法要觀察是否有細(xì)胞遷移出來(lái),。正常情況下48~72h可換液一次,。3.細(xì)胞狀態(tài)判斷正常貼壁細(xì)胞在培養(yǎng)幾天后，會(huì)逐漸貼滿整個(gè)瓶底或者皿底,，有的呈纖維狀,，有的呈多邊形。下圖均為比較健康的原代細(xì)胞圖（左：小鼠成纖維細(xì)胞,；右：雞胚成纖維細(xì)胞,；下：人成纖維細(xì)胞）。成都正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒廠家供應(yīng)用多聚賴氨酸（或參照說(shuō)明書(shū)）包被培養(yǎng)瓶,。

取材的基本要求和注意事項(xiàng)敘述如下：一,、取材的基本要求（1）取材要注意新鮮和保鮮新鮮組織易于培養(yǎng)成功，取材時(shí)應(yīng)盡量在4~6h內(nèi)能制作成細(xì)胞,，盡快入箱培養(yǎng),，若不能即時(shí)培養(yǎng)，應(yīng)將組織浸泡于培養(yǎng)液內(nèi),，于4℃存放,。若組織塊較大，應(yīng)在除去表面血塊,、壞死組織,、脂肪和結(jié)締組織后，切碎于培養(yǎng)液內(nèi)4℃存放,，但時(shí)間不能超過(guò)24h,。對(duì)于已切碎的組織或血液、淋巴組織應(yīng)加入含10%二甲基亞砜的培養(yǎng)基,，按細(xì)胞凍存方式于液氮中冷凍保存,。（2）取材應(yīng)嚴(yán)格無(wú)菌所取標(biāo)本材料應(yīng)在無(wú)菌條件下進(jìn)行，為了確保無(wú)菌,，對(duì)所取材料若疑有污染的可能,，應(yīng)將所取組織在含高濃,。

原代細(xì)胞培養(yǎng)注意事項(xiàng)：1.收到細(xì)胞時(shí)，要鏡下觀察是否有污染情況,；收到細(xì)胞的前幾天,，要做好各種倍數(shù)的鏡下拍照記錄，以防細(xì)胞出現(xiàn)問(wèn)題后,，可以跟公司很好地溝通,。2.收到細(xì)胞后，不要馬上處理,。應(yīng)置于培養(yǎng)箱中靜置4h以上再操作,。如果不著急，可靜置過(guò)夜,。3.細(xì)胞的靠前次傳代,，一定要密度高一些傳代，原代細(xì)胞傳代密度低,，很難長(zhǎng)起來(lái),。建議1:2-1:3傳代。4.原代細(xì)胞傳代時(shí)（內(nèi)皮細(xì)胞,，貼壁為例）,，0.25%+0.53nM的胰酶消化，1ml消化液37度培養(yǎng)箱內(nèi)消化30sec,，再加入5ml培養(yǎng)基（正常消化貼壁細(xì)胞,，我們使用胰酶和培養(yǎng)基的量是1:1，但是原代細(xì)胞必須用大量培養(yǎng)基中和胰酶）,。5.原代細(xì)胞不建議凍存,，因?yàn)閮龃婧苋菀讖?fù)活不成功。如果要凍存的話,，建議在P2或P3代凍存,，凍存液中的血清越多越好，建議比例9（血清）:1（DMSO）,。6.原代細(xì)胞復(fù)蘇時(shí)，置于37-38度水浴融化細(xì)胞,，并加入10ml培養(yǎng)液（正常貼壁細(xì)胞復(fù)蘇時(shí),，也可以使用這種比例，復(fù)蘇成活率會(huì)較大提高）,，離心重懸鋪板,。在這些細(xì)胞之間能產(chǎn)生一些促生長(zhǎng)的活性物質(zhì)，使細(xì)胞彼此互相促進(jìn)存活和生長(zhǎng),。

原代細(xì)胞的培養(yǎng)與建系細(xì)胞的來(lái)源多樣,，培養(yǎng)方法也各不相同,，凡是來(lái)源于胚胎、組織部位及外周血,，經(jīng)特殊分離方法制備而來(lái)的原初培養(yǎng)的細(xì)胞稱之為原代細(xì)胞,。原代細(xì)胞經(jīng)分散接種之手段稱為傳代。凡能經(jīng)傳代方式進(jìn)行再次培養(yǎng)的細(xì)胞稱為傳代細(xì)胞,。若能穩(wěn)定生長(zhǎng)傳至10~20代以上的細(xì)胞可確立為細(xì)胞系,。若有條件能開(kāi)展單細(xì)胞克隆、純化,，經(jīng)大量擴(kuò)增后所形成的生物學(xué)特性穩(wěn)定的克隆化細(xì)胞群,，稱之為細(xì)胞株或克隆細(xì)胞。此過(guò)程稱為細(xì)胞的純化或細(xì)胞克隆,。這些基本技術(shù)是從事細(xì)胞培養(yǎng)工作的基礎(chǔ),，只有熟悉和掌握了基本技術(shù),才可能更快捷地學(xué)習(xí)和掌握其他方法,本章重點(diǎn)敘述常用的基本技術(shù)?？壳肮?jié)原代細(xì)胞的取材人和動(dòng)物細(xì)胞的取材是原代細(xì)胞培養(yǎng)成功的首要條件,，是進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)的靠前步，若取材不當(dāng),，將會(huì)直接影響細(xì)胞的體外培養(yǎng),。會(huì)極大提高原代培養(yǎng)的細(xì)胞在體外存活率。蕪湖深圳原代細(xì)胞分離試劑盒

原代細(xì)胞是指從機(jī)體取出后立即培養(yǎng)的細(xì)胞,。成都正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒廠家供應(yīng)

原代細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)要點(diǎn)：轉(zhuǎn)染過(guò)程不可添加物品,，否則會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞死亡；開(kāi)始實(shí)驗(yàn)siRNA的用量設(shè)置在終濃度10nM,、30nM,、50nM、100nM進(jìn)行摸索,，后續(xù)實(shí)驗(yàn)根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果修改,。RFectPM可用來(lái)轉(zhuǎn)染siRNA、antisenseRNA,、microRNA等200bp以內(nèi)的小分子RNA和DNA,，可轉(zhuǎn)染絕大多數(shù)原代細(xì)胞。對(duì)于大多數(shù)原代細(xì)胞,，RFectPM的細(xì)胞轉(zhuǎn)染陽(yáng)性率都在80%以上,，而轉(zhuǎn)染細(xì)胞死亡率不到10%。RFectPM的使用也極其簡(jiǎn)便,，先將sRNA與RFectPM室溫混合,，再將siRNA-RFectPM混合物直接加入含培養(yǎng)基的細(xì)胞，血清對(duì)轉(zhuǎn)染效果沒(méi)有影響,，不必刻意添加或更換培養(yǎng)液,。成都正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒廠家供應(yīng)